如何辨別花粉的好壞
表7蜂花粉分級的質量指標
表7蜂花粉分級質量指數(續)-1
註:碎骨料指數指基層采集時的限值。
檢驗方法分為感官檢驗和理化檢驗。
(1)感官測試
用眼睛或放大鏡觀察，聞壹聞，嘗壹嘗，根據花粉的顏色、狀態、氣味和味道進行判斷。
①雜質測定
購買時，目測無明顯雜質。將手插入蜂花粉包裝袋，手指向後彎曲，慢慢從袋中提出。手指上沒有沙子和細土，說明比較純凈。或者準確稱取約100g蜂花粉樣品，放入搪瓷盤中，挑出雜質稱重，用以下公式計算雜質:
雜質=雜質重量(克)/樣品重量(克)×100%
②單個花粉團率的測定。
也稱計數法，即從蜂花粉包裝中隨機取出幾克蜂花粉，用手數100，挑出蜜源植物的蜂花粉顆粒，按以下公式計算:
單個花粉團率=該蜜源植物的蜂花粉團(粒)數/蜂花粉團(粒)總數×100%。
當根據顏色難以區分蜂花粉顆粒的品種時，可以用顯微鏡檢驗其區別。
③水分測定
也稱為烘幹。準確稱取約10g蜂花粉樣品，置於已幹燥至恒重的培養皿或鋁盤中，樣品厚度約5mm。放入電吹風幹燥箱中，105℃幹燥2-4小時後取出，放入烘幹機中，冷卻至室溫後稱重。在相同溫度下重復幹燥約65438±0小時，直到重量恒定(兩次重量之差小於2 mg)。根據以下公式計算:
水分=B-C/B-A×100%
其中A為培養皿的重量(克)，B為樣品和培養皿的重量(克)，C為B達到恒重時的重量(克)。平行試驗結果的允許誤差為0.4%。
④顆粒破碎的測定。
稱取約50克蜂花粉樣品，用20目篩篩出破碎的顆粒和粉末，稱重，用下列公式計算:
破碎顆粒=篩分後的破碎顆粒重量(g)/蜂花粉樣品重量(g) ×100%
⑤蛋白質測定。
凱氏定氮法平行實驗結果的允許誤差為0.6%。
試劑:
濃硫酸(分析純)
硫酸銅和硫酸鉀混合試劑:稱取含5個結晶水的硫酸銅3g和硫酸鉀9g，放入研缽中，混合均勻，磨細。
田氏混合指示劑:吸取50毫升0.1%亞甲藍乙醇溶液和200毫升0.1%甲基紅乙醇溶液，混合搖勻，貯存於棕色瓶中。
2%硼酸溶液:稱取2g硼酸，加入約50 ~ 60ml蒸餾水溶解並稀釋至100ml，搖勻，然後滴加田氏混合指示劑，搖勻至溶液呈紫色。
0.1 mol/L鹽酸標準溶液:量取9 ml濃鹽酸，加蒸餾水稀釋至1000 ml，搖勻。
校準:準確稱取0.15g在270 ~ 300℃幹燥至恒重的標準無水碳酸鈉，置於150ml錐形瓶中，加50ml蒸餾水溶解，滴加2滴田氏混合指示劑，用上述鹽酸溶液滴定至溶液由綠色變為紫色，按下式計算鹽酸的摩爾濃度(m):
M=W/V×0.106
式中，V為鹽酸溶液消耗的體積(ml)；
W——無水碳酸鈉的重量(g)。
將0.1 mol/L鹽酸溶液用蒸餾水稀釋10倍，得到0.01 mol/L鹽酸標準溶液(使用前配制)。
40%氫氧化鈉溶液。
儀器設備:1/10000天平、消化管、容量瓶、錐形瓶、移液管、25ml滴定管、量筒、壹套凱氏半微量蒸餾裝置、調溫遠紅外消化電爐。
測定步驟:
消化:準確稱取約50 ~ 60mg磨細混勻的蜂花粉樣品，置於消化管中，加入300g硫酸鉀和硫酸銅混合試劑和3ml濃硫酸，將消化管插入調溫遠紅外消化器的孔中，接通電源，在通風櫃中消化，待消化液清澈亮綠色時消化完成(消化時間約1小時)。
蒸餾:消化液冷卻後，定量轉入蒸餾器，用少量蒸餾水沖洗消化管數次，洗滌液並入蒸餾器。在蒸餾器中加入11 ~ 12 ml的40%氫氧化鈉溶液後，加入5 ml蒸餾水(壹半流入蒸餾器，另壹半密封在玻璃中)，用調溫電爐開始蒸餾，用裝有10 ml的2%硼酸溶液的錐形瓶吸收蒸餾釋放的氮氣，直至錐形瓶中溶液的顏色由紫紅色變為紅色。
滴定:用0.01 mol/L鹽酸標準溶液滴定錐形瓶中吸收的氨量，直至溶液由綠色變為紫紅色，按下式計算:
蛋白質(%)=(va-VB)×m×0.014×6.25/w×100。
式中，VA——滴定樣品消耗的鹽酸標準溶液的毫升數；VB——滴定空白消耗的鹽酸標準溶液的毫升數；
M——鹽酸標準溶液的摩爾濃度；
W——稱取樣品的克數；
0.014-1毫克氮；
6.25——氮轉化為蛋白質的系數。
⑥維生素C的測定:
用2，6-二氯苯酚靛酚鈉鹽滴定法，平行試驗結果的允許誤差為0.3 mg /100 g。
試劑:
2%草酸溶液。
標準維生素C溶液:準確稱取約20 mg維生素C(分析純)，置於100 ml容量瓶中，用2%草酸溶液稀釋至刻度，搖勻(使用前配制)。
2，6-二氯酚靛酚鈉溶液:稱取約50毫克2，6-二氯酚靛酚鈉(分析純)，溶於50毫升熱蒸餾水中，冷卻，定量轉移至250毫升容量瓶中，用蒸餾水稀釋至刻度，置棕色瓶中，冷藏。
校準:準確吸取標準維生素C溶液2ml，加入2%草酸溶液5ml，用2，6-二氯苯酚靛酚鈉溶液滴定至粉紅色，終點為15s不褪色。根據已知的標準維生素C溶液和2，6-二氯酚靛酚鈉溶液的用量，按下式計算1毫升2，6-二氯酚靛酚。
W=A×2/V
其中W-1毫升2，6-二氯苯酚靛酚鈉溶液相當於毫克維生素C；
a——1毫升維生素C標準溶液中維生素C的毫克數；
V——滴定2毫升維生素C標準溶液所消耗的2，6-二氯酚靛酚鈉溶液的毫升數。
15%亞鐵氰化鉀溶液。
30%醋酸鋅溶液。
儀器:壹套真空過濾裝置、托盤扭秤和普通玻璃器皿。
測定步驟:
樣品制備:準確稱取約10g蜂花粉樣品，置於研缽中，加入少許2%草酸溶液研磨，定量轉移至100ml容量瓶中，將2%草酸溶液稀釋至刻度，加入幾毫升15%亞鐵氰化鉀溶液，再加入幾毫升30%醋酸鋅溶液(直至溶液不沈澱)。
滴定:準確吸取10 ml樣品溶液，置於錐形瓶中，用2，6-二氯苯酚靛酚鈉溶液滴定至呈粉紅色，終點為15秒不褪色。記下2，6-二氯酚靛酚鈉溶液的毫升數，按下式計算:
w =(V-V 1)×N/b×b/a×100
其中w-100g蜂花粉樣品含維生素C毫克；
V1——滴定空白消耗的2，6-二氯苯酚靛酚鈉溶液的毫升數；
N-1毫升2，6-二氯苯酚靛酚鈉溶液相當於毫克維生素C；
B——滴定所取樣品溶液的毫升數；
A——樣品的克數；
B——樣品溶液的總毫升數。
⑦灰分測定:
儀器:1/10000分析天平、高溫爐、坩堝。
測定步驟:準確稱取約10g蜂花粉樣品，放入恒重坩堝中，在105℃烘箱中幹燥至近恒重，300℃灼燒至完全碳化，移入高溫爐中，600℃灼燒至完全灰化，冷卻至200℃以下，放入幹燥器中，冷卻至室溫，準確稱取至。使用以下公式計算結果:
灰分(%)=W2-W3/W1-W3×100
其中w 1-坩堝和樣品的重量(g)；
w2-坩堝和灰分的重量(g)；
W3——燒至恒重的坩堝重量(g)。
平行試驗的允許誤差為0.3%。
⑧過氧化氫酶測定-氣體法；
儀器:徐-胡型氣體容積法蜂花粉活性檢測儀。
試劑:
3%過氧化氫溶液:將30%過氧化氫溶液稀釋10倍。
測定步驟:
將清水倒入水浴至產氣管架，打開電源，調節溫控器至指示燈亮度最大。當水溫升至38℃時，調節溫控器關閉指示燈，待水溫保持在37℃5分鐘後再使用。
準確稱取約0.5g蜂花粉樣品，置於小燒杯中，加入65438±0ml蒸餾水，用圓形玻璃棒將蜂花粉團研磨成均勻的蜂花粉水懸浮液。
用帶三通閥的5 ml產氣管吸盡蜂花粉水懸液，除去空氣，關閉閥門，置於37℃水浴中10分鐘(簡稱A管)。
用另壹根產氣管吸取5ml的3%過氧化氫溶液，排除空氣，關閉閥門，置於37℃水浴中10分鐘(簡稱B管)。
10分鐘後，將A管和B管從水浴中取出，打開B管閥門排除空氣，連接A管和B管之間的接口，然後從B管向A管註入1 ml過氧化氫溶液，關閉閥門，將A管放入37℃的水浴中，同時記錄2分鐘後的產氣量(ml)
過氧化氫酶單位= 1268× V。
式中1268——37℃時1毫升氧氣的重量(微克)；
v——37℃時1g蜂花粉1min產生的氧氣體積(ml)。
平行試驗結果的允許誤差為50個過氧化氫酶單位。